怎么判断wb条带能用在论文里

问：放在论文中的WB条带可以不是一块胶上的吗

1. 答：放在论文中的WB条带应该不可以不是一块胶上的
   尽管WB实验这么玄但有的坑还是可以规避的今天就跟大家分享下WB实验中你一定要避开的“坑”如何拿到漂亮的WB结果！
   蛋白质的提取提取蛋白质过程中，应在低温环境下进行，以抑制蛋白酶的水解作用（可加入适合的蛋白酶抑制剂）。
   蛋白样品建议分装后冷冻干燥或直接以液体态置-80℃中保存，不要反复冻融。
   蛋白浓度低时，可使用超滤膜浓缩或者用真空冻干机将蛋白冻干。
   提高跑胶质量的Tips
   小电压会使胶的分子筛效应得到充分发挥。电压越小，条带越漂亮，浓缩胶55V，分离胶75V就能跑得很好，但是实验的时间会很长。
   胶的均匀度，胶越均匀，条带越窄，分离越均匀。倒胶之前，一定要充分混匀(不要有气泡)，玻璃板一定要干净，双蒸水隔离时，一定要比较轻地加上去，避免稀释上层的分离胶。

问：WB的数据在论文中应该怎样给出才算标准

1. 答：你这怎么都没有作者啊,文献第一项要写的都是作者,还有你这还缺引用的页数,这些都有了才能编写参考文献,规则为 M—专著 ;C—论文集 ; N——报纸文章; J—期刊文章; D——学位论文; R—研究报告 ;S——技术标准 ; P—专利 参考文献应写成[序号]. 编著者. 书名[M]，出版地：出版社，年代，起止页码[序号]. 作者. 论文名称[J]，期刊名称，年度，卷（期）：起止页码其中,你所列的应为[M]的有:4和10其余的是什么根据你自己的论文查看吧,因为我也不是很清楚你从哪里找的参考文献,但就看题目应该是[R]

问：同一篇论文wb条带同一张膜上内参可以用两次吗

1. 答：不可以。
   WB条带只能在同一次曝光中对同一张膜上内参一次。WB的结果只能在同一次曝光中对同一张膜上的同一个蛋白上进行比较。